综   述 
 
      在疾病的早期阶段,患有AD的人脑就表现出超兴奋性。后续产生的大量突触丢失,可能与认知障碍有关。目前并无能够校正AD的治疗方案。药物开发的部分问题来自于研究的对象---转基因小鼠疾病模型。它对于潜在人体疗效的预测能力很差。虽然在动物疾病模型上开展药物测试的重要性无可争议,但是如果同时能在人类背景下得到候选药物的效力证据,那么药物开发的成功率将可能更高。
 
      基于这个设想,我们开发了一个平台,在2D培养的(h)iPSC皮层神经元和3D培养的类脑器官上,开展了一系列的电生理实验,包括膜片钳、钙成像和微电极阵列(MEA)这三种。为了在这些人类来源的样本上鉴定异常电活动,我们将含有家族遗传AD突变的hiPSC衍生神经元与野生型等基因对照组在上述平台上进行了比较。结果发现两种不同的AD神经样本都有着异常的电生理表型,比如说更高频率的自发动作电位、网络震荡变慢(大约在1Hz)以及超同步的网络电活动。而随后的药物处理揭示了很重要的信息:NitroSynapsin这种候选药物(双变构的NMDAR拮抗剂)能够消除上述的一系列过度活跃现象,而盐酸美金刚(FDA批准用于中到重度AD治疗)却无效。

 

MEA实验揭示NitroSynapsin能够纠正神经网络的超同步性
 

 

      在MEA记录实验中,我们发现了一个有趣的现象:AD样本在网络活动的水平上存在着超同步簇放电表型。这种异常的同步表型在过去,起码部分地,被归结于星形胶质细胞暴露在Aβ寡聚体中后释放出的谷氨酸。而突触外NMDA类谷氨酸受体(eNMDARs)的活动过度则最终导致了突触的损伤。在图4a–f及补充数据图5a–d中可见,相较于WT组,AD组的网络簇放电同步性、频率和簇内平均放电率有着2-8倍的明显升高。NitroSynapsin能浓度依赖性地降低这种异常电活动。此外,在5μM的浓度下,它还能够将加药前AD样本(ΔE9/WT)相比WT组而言在发放频率、网络簇放电频率和同步性方面的大幅升高基本上完全恢复。而同样浓度的药物处理在WT组中却没有明显的类似效果(补充数据图5a–e)。

  

图4 2D培养的(h)iPSC皮层神经元电活动检测

 

a)/b)/c) 依次为WT/WT、 M146V/WT、APPswe/WT神经元对照组(左)、5µM(中)和10µM(右) NitroSynapsin处理放电热图和光栅图。(网络簇放电以红框标识。)

 

d)/e)/f) 上述处理的样本平均放电率、网络簇放电率和同步性参数比较柱状图。结果显示NitroSynapsin处理可引起这三个参数的明显降低,并且药物浓度越高,降低的幅度越大。(柱形图上数字代表样本量大小;ANOVA软件计算post hoc Dunnett’s 检验(*)和Sidak’s检验(#): *,# p<0.05; **,## p<0.01; ***,### p<0.001; #### p <0.0001。)后续各图中的标识也与此相同。

 

上述结果说明,NitroSynapsin能浓度依赖性地降低AD组神经元异常电活动。

 

补充图5 2D培养的(h)iPSC皮层神经元电活动检测

 

a)/b)分别为使用5µM NitroSynapsin处理WT/WT、 ΔE9/WT神经元前后放电热图和光栅图。

 

c)/d)/e)依次为上述处理的样本平均放电率、网络簇放电率和同步性参数比较柱状图。ΔE9/WT与对照组相比,存在超兴奋性。5µM NitroSynapsin处理即可引起这三个参数的明显降低,并且低至WT组的水平。说明NitroSynapsin可逆转AD组样本异常的神经网络电活动。

 

      另外,我们还测试了hiPSC 衍生的3D类脑器官样本,结果见图5和补充数据图6。这些样本表现出重复性很高的类皮质层,并且含有成熟的GABA能中间神经元(图5a和补充数据图6b)。和WT组相比,AD类脑器官有着AD类脑器官有着更多的电活动及Aβ免疫染色区域(图5b,c和补充数据图6a)。在MEA监测中,AD类脑器官表现出类似于2D样本的表型,即网络簇放电频率和发放同步性较WT组更高。传统的NMDAR阻断剂(比如APV)能够防止这种过度活跃的现象发生。说明这些异常是由eNMDARs失调导致的(补充数据图7)。10 μM浓度的NitroSynapsin药物处理能够达起到的作用类似于上述的5μM浓度下2D培养AD样本产生的表型变化(图5b-f)。相比之下,等摩尔量的memanine药物处理对于降低过度活跃表型却不起作用(图5b-f)。
 

 

图5 培养2个月的脑类器官电活动检测

 

a) 使用Nestin(红)、TBR2(紫)、CTIP2(绿)和DAPI(蓝)对WT/WT、 M146V/WT和APPswe/WT进行染色标记检测结果。紫色和绿色区域说明类器官已经发展出类皮层特异的神经元。


b) 药物处理三组样本的放电热图和栅图,从左到右依次为对照组、10µM Memantine和10µM NitroSynapsin处理。

 

c)/d)/e)/f) 上述处理的样本平均放电率MFR、MFR降低百分比、网络簇放电率和同步性参数比较柱状图。NitroSynapsin处理可引起这些参数的明显降低,并且药物浓度越高,降低的幅度越大。


因此,该结果说明NitroSynapsin能浓度依赖性地降低AD组类器官的异常电活动。

 

补充图6 培养2个月的WT/WT、 M146V/WT和APPswe/WT类脑器官进行免疫染色结果。三组样本中红色区域说明类脑器官中已有Aβ蛋白(a)积累以及发展出GABA能神经元(b)。

 

补充图7培养2个月的WT/WT、 M146V/WT和APPswe/WT类脑器官,经50µM APV处理前后放电光栅图比较。后两者存在明显的超兴奋性,并且这一特性可被50µM APV (NMDAR阻断剂)所抑制。说明AD组样本的超兴奋性是由于eNMDARs失调导致的。

 

MEA记录实验设计:

使用了Axion公司的CytoView12孔MEA板。选取hiPSC开始分化后的5-6周时间段开展实验。在加药前后,使用Axion公司的Maestro系统及其自带的AxIS软件进行电生理信号记录。NitroSynapsin药物的浓度为5 μM,采样率设定为12.5 kHz,信号模拟选定为‘神经发放模式’。在计算发放频率时,活动电极的判定标准为每分钟记录到的发放数量大于5次。网络簇放电被定义为单孔内最少有25个电极在小于100ms的发放间隔中记录到了大于10次的发放。网络簇放电频率单位为Hz,通过将网络簇放电次数总和除以分析时长来计算得到。在共放电分析时,同步窗口的定义为:在计算互相关曲线下面积时用到的零点前后的时间窗口。我们将这个时间窗口设定为20ms。同步指数用于衡量放电的同步性,其读值在0和1之间,且无单位。在计算时要合并整孔的电极间互相关数据。指数值越接近于1,则代表样本的同步性越好。2D培养神经元样本分为3-5组,类脑器官为4组,都是分开单独分化。     
 
结论

 

 
      Maestro MEA的检测结果证明了:1) 人来源的hiPSC培养2D样本和类脑器官,可以作为神经网络中突触可塑性的研究模型,用于新型药物的药效验证2) 在体外,AD病人来源的异常神经网络可以被NitroSynapsin药物再平衡,并且比已有AD治疗药物Memantine更加有效
 

 

 

 

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END

 

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